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MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng)

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  • 更新時間2021-04-20
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北京易科泰生態(tài)技術有限公司成立于2002年,是從事于生態(tài)測量監(jiān)測與技術推廣的高科技專業(yè)公司,主要致力于土壤、植物、動物、水體與藻類、及生態(tài)環(huán)境領域*進儀器技術的引進推廣和技術研發(fā)集成,并為生態(tài)環(huán)境實驗研究與監(jiān)測、生態(tài)修復及生態(tài)保護提供規(guī)劃設計、技術方案與系統(tǒng)集成、分析測量和咨詢。公司技術團隊80%以上具備碩士或碩士以上學位,并與*研究生院、中科院植物研究所、中科院地理科學與資源研究所、中國農科院、中國林科院、中國環(huán)科院、中國水科院、清華大學、中國農業(yè)大學、中國林業(yè)大學、北京大學等建立了*的技術合作交流關系。

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MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng)
MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng) 產品詳情


果蠅作為經濟實用的模式動物,可用于中樞神經系統(tǒng)紊亂、炎癥性病變、心血管疾病、癌癥以及糖尿病等治療研究,而這些疾病的發(fā)生從生理上來說都與生物個體*的代謝功能異常密切相關。

MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng)是的美國Sable Systems International動物代謝測量公司生產的一款16通道、高分辨率及自動化的果蠅代謝監(jiān)測儀器,可廣泛用于代謝紊亂造成的各種流行疾病治療的機理研究。

image.png

MAVEn™果蠅代謝系統(tǒng)作為果蠅代謝分型監(jiān)測方面的產品,主要具備以下特點:

1. 改變了傳統(tǒng)的單只果蠅的封閉或半封閉式測量模式,實現每個測量室都有實時氣流通過的*開放式測量,避免了測量時內出現缺氧(hypoxia)或高碳酸血癥(hypercapnia),可一次測量多達16只個體。

2. 15秒就可以完成一只果蠅的代謝監(jiān)測,這代表了目前技術的水平。

3. 數據可以通過SD卡把帶時間標簽的CSV格式直接導出到電腦。

4. 可選配FLIC果蠅覓食、AD-2果蠅活動、氣體(氧氣、二氧化碳、水汽以及其它可檢測氣體)等監(jiān)測單元。

5. 參考文獻*多,高達4萬多篇,屬于前沿科技。

image.png

具體性能指標:

1. 氣流流速:5毫升/分鐘-200毫升/分鐘,質量流量計,PID精確控制,精度為2%。

2. 昆蟲測量時間:15秒-3小時可程序化選擇;基線測量時間:15秒-3小時可程序化選擇。

3. 氣壓測量:分辨率1Pa,精度0.05%。

4. 光照水平:0.1-5000勒克斯。

5. 溫度測量:0-50℃,分辨率0.01℃,精度±0.25℃。

6. 模擬輸入:6個模擬輸入,16bit分辨率,-5至+5伏電壓信號,可接SSI其它儀器或實驗室其它氣體分析儀等。

7. 數據格式:CSV格式;數據存儲:SD卡,*支持32G的SD卡。

8. image.png雙通道高精度差分式氧氣分析測量儀:測量技術:燃料電池原理氧氣傳感器,雙通道;氧氣濃度量程0-*(用戶可自定義設置5個級別);差值量程±50%;精度0.1%(O2濃度2-*時);分辨率0.0001%O2;漂移< 0.01%每小時(溫度恒定情況下);響應時間小于7秒;24小時漂移<0.01%;20分鐘噪音<3ppm RMS;數字過濾(噪音)0-40秒可調,增幅0.2秒,內置A/D轉換器分辨率16bits;溫度、壓力補償;傳感器溫度測量范圍0-60℃,精度0.2℃,分辨率0.001℃;大氣壓測量分辨率0.0001kPa,精度為滿量程的0.05%;適用流量范圍5-2000mL/min;4通道模擬信號輸出(0-5V BNC)可輸出通道1的氧氣濃度,通道2的氧氣濃度,1和2的差值,大氣壓;數字輸出:RS-232;具4行文字LCD顯示屏,帶背光,可同時顯示2個通道的氧氣含量和它們的差值,以及大氣壓;*PID(Proportional-Integral-Derivative)溫控單元,保證內部氧氣傳感器溫度恒定,進一步提高了氧氣測量的精度和穩(wěn)定性;供電12-24VDC,8A,配交流電適配器;工作溫度:5-45℃,無冷凝;重量6.4kg;尺寸43.2cm×35.6cm×20.3cm

9. 超高精度二氧化碳分析測量儀:用于測量微小昆蟲(比如果蠅、蚊子等)或蜱螨類微小動物的呼吸代謝,可同時測量CO2濃度和H2O濃度;CO2量程0-3000ppm;準確度<1%;分辨率0.01ppm;H2O量程0-60mmol/mol;準確度1%;

10. 二次抽樣單元:內置氣泵、精密針閥、質量流量計,可用來給氣流樣本做二次抽樣,也可單獨作為氣源使用;流量范圍5-2000mL/min;精度為讀數的10%;分辨率1mL/min;具備2行顯示LCD顯示屏;帶0-5V BNC模擬信號輸出;數字輸出RS-232;供電12-15VDC,20-350mA,配交流電適配器;工作溫度:0-50℃,無冷凝;重量1.5kg;尺寸16cm×13cm×20cm;

產地:美國

文獻案例:

在2016年已發(fā)表的果蠅有關文獻中,使用SSI果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng)的達14篇,2015年11篇,截止目前相關文獻共計500多篇。

1. Andrew N R, Ghaedi B, Groenewald B. The role of nest surface temperatures and the brain in influencing ant metabolic rates[J]. Journal of Thermal Biology, 2016, 60: 132-139.

2. Baaren J, Dufour C M S, Pierre J S, et al. Evolution of life‐history traits and mating strategy in males: a case study on two populations of a Drosophila parasitoid[J]. Biological Journal of the Linnean Society, 2016, 117(2): 231-240.

3. Bartholomew N R, Burdett J M, VandenBrooks J M, et al. Impaired climbing and flight behaviour in Drosophila melanogaster following carbon dioxide anaesthesia[J]. Scientific reports, 2015, 5.

4. Basson C H, Clusella-Trullas S. The behavior-physiology nexus: behavioral and physiological compensation are relied on to different extents between seasons[J]. Physiological and Biochemical Zoology, 2015, 88(4): 384-394.

5. Bosco G, Clamer M, Messulam E, et al. EFFECTS OF OXYGEN CONCENTRATION AND PRESSURE ON Drosophila melanogaster: OXIDATIVE STRESS, MITOCHONDRIAL ACTIVITY, AND SURVIVORSHIP[J]. Archives of insect biochemistry and physiology, 2015, 88(4): 222-234.

6. Casas J, Body M, Gutzwiller F, et al. Increasing metabolic rate despite declining body weight in an adult parasitoid wasp[J]. Journal of insect physiology, 2015, 79: 27-35.

7. Correa Y D C G, Faroni L R A, Haddi K, et al. Locomotory and physiological responses induced by clove and cinnamon essential oils in the maize weevil Sitophilus zeamais[J]. Pesticide biochemistry and physiology, 2015, 125: 31-37.

8. DeVries Z C, Kells S A, Appel A G. Estimating the critical thermal maximum (CT max) of bed bugs, Cimex lectularius: Comparing thermolimit respirometry with traditional visual methods[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 2016, 197: 52-57.

9. Dreiss A N, Séchaud R, Béziers P, et al. Social huddling and physiological thermoregulation are related to melanism in the nocturnal barn owl[J]. Oecologia, 2016, 180(2): 371-381.

10. Duun Rohde P, Krag K, Loeschcke V, et al. A Quantitative Genomic Approach for Analysis of Fitness and Stress Related Traits in a Drosophila melanogaster Model Population[J]. International Journal of Genomics, 2016, 2016.

11. Fischer K E, Gelfond J A L, Soto V Y, et al. Health effects of long-term rapamycin treatment: the impact on mouse health of enteric rapamycin treatment from four months of age throughout life[J]. PloS one, 2015, 10(5): e0126644.

12. Groom D J E, Toledo M C B, Welch K C. Wingbeat kinematics and energetics during weightlifting in hovering hummingbirds across an elevational gradient[J]. Journal of Comparative Physiology B, 2016: 1-18.

13. Gudowska A, Boardman L, Terblanche J S. The closed spiracle phase of discontinuous gas exchange predicts diving duration in the grasshopper, Paracinema tricolor[J]. Journal of Experimental Biology, 2016: jeb. 135129.

14. Haddi K, Mendes M V, Barcellos M S, et al. Sexual Success after Stress? Imidacloprid-Induced Hormesis in Males of the Neotropical Stink Bug Euschistus heros[J]. PloS one, 2016, 11(6): e0156616.

15. Haddi K, Oliveira E E, Faroni L R A, et al. Sublethal exposure to clove and cinnamon essential oils induces hormetic-like responses and disturbs behavioral and respiratory responses in Sitophilus zeamais (Coleoptera: Curculionidae)[J]. Journal of economic entomology, 2015: tov255.

16. Horváthová T, Antol A, Czarnoleski M, et al. Does temperature and oxygen affect duration of intramarsupial development and juvenile growth in the terrestrial isopod Porcellio scaber (Crustacea, Malacostraca)?[J]. ZooKeys, 2015 (515): 67.

17. Kivel? S M, Lehmann P, Gotthard K. Do respiratory limitations affect metabolism of insect larvae before moulting: an empirical test at the individual level[J]. Journal of Experimental Biology, 2016: jeb. 140442.

18. Lebeau J, Wesselingh R A, Van Dyck H. Nectar resource limitation affects butterfly flight performance and metabolism differently in intensive and extensive agricultural landscapes[C]//Proc. R. Soc. B. The Royal Society, 2016, 283(1830): .

19. MacMillan H A, Schou M F, Kristensen T N, et al. Preservation of potassium balance is strongly associated with insect cold tolerance in the field: a seasonal study of Drosophila subobscura[J]. Biology letters, 2016, 12(5): .

20. Meyers P J, Powell T H Q, Walden K K O, et al. Divergence of the diapause transcriptome in apple maggot flies: winter regulation and post-winter transcriptional repression[J]. Journal of Experimental Biology, 2016: jeb. 140566.

21. Plav?in I, Sta?ková T, ?ery M, et al. Hormonal enhancement of insecticide efficacy in Tribolium castaneum: Oxidative stress and metabolic aspects[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 2015, 170: 19-27.

22. Rodrigues C G, Krüger A P, Barbosa W F, et al. Leaf Fertilizers Affect Survival and Behavior of the Neotropical Stingless Bee Friesella schrottkyi (Meliponini: Apidae: Hymenoptera)[J]. Journal of economic entomology, 2016, 109(3): 1001-1008.

23. Thienel M, Canals M, Bozinovic F, et al. The effects of temperature on the gas exchange cycle in Agathemera crassa[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 2015, 183: 126-130.

24. Williams C M, Chick W D, Sinclair B J. A cross‐seasonal perspective on local adaptation: metabolic plasticity mediates responses to winter in a thermal‐generalist moth[J]. Functional Ecology, 2015, 29(4): 549-561.

25. Williams C M, Szejner-Sigal A, Morgan T J, et al. Adaptation to Low Temperature Exposure Increases Metabolic Rates Independently of Growth Rates[J]. Integrative and comparative biology, 2016: icw009.


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